Herstellung des Kaliumchlorid-PCR-Puffers

Diese Anleitung beschreibt die Herstellung eines PCR-Puffers auf Kaliumchloridbasis mit einer festgelegten Molarität für den Laborgebrauch.

PCR-Puffer auf Kaliumchloridbasis wird häufig zur Optimierung der DNA-Polymerase-Aktivität verwendet.

PCR-Puffer auf Kaliumchloridbasis – Zusammensetzung

NameFormelKonzentrationCAS
Tris-Cl (pH 9.0)C₄H₁₁NO₃10 mM77-86-1
KaliumchloridKCl50 mM7447-40-7
MagnesiumchloridMgCl₂1.5 mM7791-18-6
Triton X-100C₃₄H₆₂O₁₁0.1% (w/v)9002-93-1

Sterilisation und Lagerung

  • Sterilisation: Filtration mit 0.22 μm.
  • Lagerung: Aliquotieren und bei −20 °C lagern.

Hinweise

  • Der pH-Wert des Puffers liegt gewöhnlich bei 8.0–9.5 und wird mit Tris-Cl eingestellt.
  • Triton X-100 ist sehr viskos; eine niedrig konzentrierte Stammlösung verwenden oder durch Tween 20 ersetzen.
  • Bei Verwendung eines PCR-Puffers auf KCl-Basis liegt MgCl₂ gewöhnlich in niedrigerer Konzentration vor (~1.5 ± 0.25 mM).
  • Der optimale PCR-Puffer hängt von der DNA-Polymerase ab; die Empfehlungen des Enzymlieferanten beachten.
  • Die direkte Verwendung von wasserfreiem MgCl₂ erzeugt Wärme; in kleinen Portionen zu einem Teil des Lösungsmittelvolumens geben.
Vorschau
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